Trasporto e conservazione

Trasporto e conservazione dei campioni

La conservazione dei campioni deve garantire la stabilità e la inalterabilità di tutti i loro costituenti nell'intervallo di tempo che intercorre tra il prelievo e l'analisi. Teoricamente tale condizione non può essre realizzata in modo completo; però è possibile ricorrere ad accorgimenti che permettono di ridurre al minimo le alterazioni, salvaguardando la rappresentatività del campione.

I contenitori usati saranno innanzitutto in materiale scelto in funzione del parametro da determinare. La precipitazione dei metalli come idrossidi, l'adsorbimento dei metalli sulle superfici del contenitore, la formazione di complessi, la variazione dello stato di valenza di alcuni elementi per ossido-riduzione, potranno essere ritardati mediante aggiunta di stabilizzanti chimici.

Infine l'attività microbica, a cui è imputabile l'alterazione di alcuni parametri analitici (ad esempio fosforo ed azoto), potrà essere convenientemente ritardata mediante l'aggiunta di battericidi e/o ricorrendo alla refrigerazione.

Per quanto riguarda la conservazione, il trasporto dei campioni e il materiale del recipiente per determinazioni fisico-chimiche, chimiche e batteriologiche si rimanda alla tabella sottostante.

Conservazione e trasporto dei campioni per determinazioni biologiche

Conservazione dei campioni di fitoplancton.

I campioni comunque prelevati (retino o bottiglie) devono essere conservati preferibilmente al buio, in soluzione di formaldeide stabilizzata e neutralizzata a pH 7-7,2 con tetraborato sodico oppure con soluzione di Lugol all'1% (10 g di I2 + 20 g di KI + 10 g di CH3COONa in 200 ml di acqua distillata).

Conservazione di campioni di zooplancton

I campioni vengono fissati in formaldeide neutralizzata; questa si aggiunge al campione in ragione del 2 - 10% a seconda della quantità degli organismi presenti.

Conservazione di campioni di benthos.

Il campione appena raccolto, in genere consiste in un certo volume di sedimento, dal quale vengono separati gli organismi viventi. In generale tale separazione avviene in due fasi di cui la prima, che ha lo scopo di ridurre le dimensioni del campione, avviene al momento del prelievo. La seconda fase avviene generalmente in laboratorio.

Per la conservazione del campione si impiega la formalina; una soluzione al 4% di formaldeide per esami istologici; mentre per altri fini una soluzione al 2%. Siccome però la formalina tende ad acidificarsi, al fine di prevenire eventuali danni al campione, si deve aggiungere un tampone costituito da borace.

Parametro		Metodi di conservazione	Periodo conservazione	Quantità (ml) campione	Materiale recipiente
TEMPERATURA	det. situ	/	/	/	/
pH	det. situ	/	/	/	/
CONDUCIBILITA' ELETTRICA	/	refrigerazione a + 4°C	24 ore	100 ml	polietilene o vetro
TORBIDITA'	/	refrigerazione a + 4°C	7 giorni	in toto(comp.Hellige)	vetro
ODORE e COLORE	det. situ	/	/	/	/
SOLIDI SOSPESI	/	/	24 ore	3000 ml	polietilene o vetro
OSSIGENO	det. situ	/	/	/	/
BOD₅	/	refrig+ 4°C(conserv.buio)	6 ore	500 ml	vetro scuro
COD	/	refrigerazione a + 4°C	8 ore	250 ml	polietilene o vetro
DUREZZA	/	/	3 giorni	100 ml	polietilene o vetro
CLORURI	/	refrigerazione a + 4°C	24 ore	200 ml	polietilene o vetro
AZOTO AMMONIACALE	/	refr.4°C (H₂SO₄xpH<2)	8 ore	500 ml	polietilene o vetro
AZOTO NITRICO	/	refr.4°C (H₂SO₄xpH<2)	8 ore	100 ml	polietilene o vetro
TENSIOATTIVI ANIONICI	/	refr.4°C (5ml H₂SO₄1:1)	24 ore	250 ml	polietilene o vetro
FOSFATI	/	refrigerazione a + 4°C	24 ORE	50 ml	polietilene o vetro
METALLI		refr.4°C (HNO₃xpH 2)	6 mesi	200 ml	vetro
COLIFORMI TOTALI E FECALI	/	refrigerazione a + 4°C	max 24 ore	500 ml	vetro sterile
STREPTOCOCCHI FECALI	/	refrigerazione a + 4°C	max 24 ore	500 ml	vetro sterile

ARNO

ATTIVITA'

ITI

ITS